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產(chǎn)品展示

細胞培養(yǎng)

產(chǎn)品簡介:細胞培養(yǎng)是指從動物活體體內(nèi)取出組織,于模擬體內(nèi)生理環(huán)境等特定的體內(nèi)條件下,進行孵育培養(yǎng),使之生存并生長。該技術(shù)現(xiàn)已廣泛應(yīng)用于生物學、醫(yī)學、新藥研發(fā)等各個領(lǐng)域。培養(yǎng)過程中,涉及到多個基本實驗操作,例如:復(fù)蘇、換液、傳代、凍存等。

產(chǎn)品型號:

更新時間:2024-07-18

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :2970

服務(wù)熱線

021-51216810

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產(chǎn)品介紹

一、產(chǎn)品介紹

細胞培養(yǎng)也叫細胞克隆技術(shù),在生物學中的正規(guī)名詞為細胞培養(yǎng)技術(shù)。通過細胞培養(yǎng)得到大量的細胞或其代謝產(chǎn)物。細胞的生長需要營養(yǎng)環(huán)境,用于維持細胞生長的營養(yǎng)基質(zhì)稱為培養(yǎng)基。培養(yǎng)基按其物理狀態(tài)可分為液體培養(yǎng)基和固體培養(yǎng)基。

細胞培養(yǎng)是指從動物活體體內(nèi)取出組織,于模擬體內(nèi)生理環(huán)境等特定的體內(nèi)條件下,進行孵育培養(yǎng),使之生存并生長。細胞培養(yǎng)現(xiàn)已廣泛應(yīng)用于生物學、醫(yī)學、新藥研發(fā)等各個領(lǐng)域。

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二、過程介紹

細胞培養(yǎng)過程中,涉及到多個基本實驗操作,例如:復(fù)蘇、換液、傳代、凍存等。

復(fù)蘇

1.把凍存管從液氮中取出來,立即投入37℃水浴鍋中,輕微搖動(注意防止蓋子不緊致使液體進入凍存管)。液體都融化后(大概1-1.5分鐘),拿出來噴點酒精放到超凈工作臺里。

2.把上述細胞懸液吸到裝10ml培養(yǎng)基的15ml的離心管中(用培養(yǎng)基把凍存管洗一遍,把粘在壁上的細胞都洗下來),1000轉(zhuǎn)離心5分鐘。

3.把上清液倒掉,加1ml培養(yǎng)基把細胞懸浮起來。吸到裝有10ml培養(yǎng)基的10cm培養(yǎng)皿中前后左右輕輕搖動,使培養(yǎng)皿中的細胞均勻分布。

4.標好細胞種類和日期、培養(yǎng)人名字等,放到37℃的5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

5.根據(jù)細胞增長速度2-3天換一次培養(yǎng)基。



換液(以貼壁細胞為例)

1.培養(yǎng)一段時間后,細胞還未長滿,而細胞培養(yǎng)基顏色由紅色逐漸變黃,說明培養(yǎng)基中營養(yǎng)物質(zhì)不足,需要及時換液。

2.吸掉原有培養(yǎng)基。

3.加入等體積新的*培養(yǎng)基。

4.放到37℃的5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。

5.培養(yǎng)過程中,要定期觀察細胞狀態(tài)。如果細胞密度達到80%-90%需要準備傳代。


傳代(以貼壁細胞為例)

1.培養(yǎng)皿中的細胞覆蓋率達到80%-90%時要傳代。

2.把原有培養(yǎng)基吸掉。

3.加適當?shù)囊鹊鞍酌?能覆蓋細胞就行),消化1-2分鐘。

4.細胞都變圓后加入等體積的含血清的培養(yǎng)基終止消化。

5.用移液槍吹打細胞,讓細胞懸浮起來。

6.把細胞吸到10ml或15ml的離心管中,1000轉(zhuǎn)離心5分鐘。

7.倒掉上清液,加1-2ml培養(yǎng)基,把細胞都吹起來。

8.根據(jù)細胞種類把細胞傳到幾個培養(yǎng)皿中,一般1: 2~3傳代。


凍存

把細胞消化下來并離心(同上)。用配好的凍存液把細胞懸浮起來,分裝到滅菌的凍存管中,靜止幾分鐘,寫明細胞種類,凍存日期。4℃ 30min,-20℃ 30min,-80℃ 過夜,然后放到液氮灌中保存。

凍存液的配制:80%的*培養(yǎng)基+10?S+10%DMSO。注意:DMSO要慢慢滴加,邊滴邊搖。


三、根據(jù)細胞生長的恃點,需要選擇不同方法進行細胞傳代

◆ 貼壁生長的細胞用消化法傳代;

◆ 部分貼壁生長(半懸浮生長)的細胞用直接吹打可傳代;

◆ 懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打傳代。

1.  貼壁細胞的消化法傳代:

1)先吸除或倒掉瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液。

2)D-Hanks液洗2~3次。

3)向瓶內(nèi)加入適量消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養(yǎng)瓶,使消化液流遍所有細胞表面。(注意:胰蛋白酶要預(yù)溫,溫度37℃左右為宜。)

4)消化最好在37℃環(huán)境下進行,消化2~5 min 后把培養(yǎng)瓶放置顯微鏡下進行觀察,發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)回縮,細胞間隙增大后,應(yīng)立即終止消化。

5)吸除或倒掉消化液,如用EDTA消化,需加Hanks液數(shù)毫升,輕輕轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶把殘留消化液沖掉,再添加培養(yǎng)液。如僅用胰蛋白酶可直接加少許含血清的培養(yǎng)液,終止消化。

6)用彎頭吸管,吸取瓶內(nèi)培養(yǎng)液,反復(fù)吹打瓶壁細胞。從培養(yǎng)瓶底部一邊開始到另一邊結(jié)束,以確保所有底部都被吹到,使細胞脫離瓶壁后形成細胞懸液。吹打時動作要輕柔,不要用力過猛。

7) 細胞計數(shù)后分別接種在新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。

8)置于37℃細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)。(注意:要定時觀察細胞,如發(fā)現(xiàn)污染,應(yīng)及時處理。)


2.  懸浮細胞的傳代:懸浮細胞傳代可離心收集細胞后傳代,或直接傳代。

離心傳代法:

1) 將細胞連同培養(yǎng)液一并轉(zhuǎn)移到15 ml 離心管內(nèi)。

2) 800~1000 rpm離心5 min。(注意:離心轉(zhuǎn)速要合適。轉(zhuǎn)速過低,不能有效分離細胞;離心速度過大,時間過長,會擠壓細胞造成損傷甚至死亡。)

3) 棄去上清,加新的培養(yǎng)液到離心管內(nèi),用吸管吹打形成細胞懸液。

4) 計數(shù),分別接種在新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。

直接傳代法:讓懸浮細胞慢慢沉淀在瓶底后,將上清液吸掉1/2~2/3,然后用吸管吹打形成細胞懸液后再傳代。


3.  部分貼壁細胞的傳代

1)部分貼壁不牢的細胞,如Hela細胞等,不經(jīng)消化處理直接吹打可使細胞從壁上脫落下來,而進行傳代。

2)對絕大部分貼壁生長的細胞,因直接吹打?qū)毎麚p傷較大,細胞常有較大數(shù)量的丟失,因而需消化后,才能吹打傳代。


四、細胞培養(yǎng)優(yōu)缺點

優(yōu)點:

1)能長期傳代,保持活性,便于監(jiān)控檢測結(jié)構(gòu)功能和生命活動。

2)培養(yǎng)條件可以人為的控制便于研究細胞代謝、物理、化學、生物因素的影響

3)可用于各種觀察和檢測手段研究活細胞的變化(變異、分化)。可從細胞水平開展亞細胞結(jié)構(gòu)和代謝分子的表達。

4)研究范圍和細胞來源廣泛,選擇性廣。

5)不同代次細胞可長期保存,既可開展同代次不同條件和方法研究,又可觀察不同代次的動態(tài)變化。

6)耗資少、經(jīng)濟、成本低、可大量培養(yǎng),利于生物制品的生產(chǎn)。

缺點:

細胞或組織生長在人工環(huán)境中,與體內(nèi)環(huán)境存在差異,細胞或組織的形態(tài)或功能會發(fā)生不同程度的改變。

 

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